INTRODUCCION A TECNICAS ESPECTROSCÓPICAS

TECNICAS ESPECTROSCOPICAS

1.FT-IR

2.UV-VIS

3.MASAS

4. RMN

E = h·ν = h·c/λ

RADIACION EFECTO

Rayos X y cósmicos

Ionizaciones de las moléculas

UV-Visible Transiciones electrónicas entre los orbítales atómicos y moleculares

Infrarrojo Deformación de los enlaces químicos

Microondas Rotaciones de los enlaces químicos

Radiofrecuencias Transiciones de spín electrónico o nuclear en los átomos de la molécula.

Espectroscopía:En general es el estudio de la interacción de la luz con la materia.

1. ESPECTROSCOPIA FT-IR

Espectroscopía Infrarroja:Issac Newton (1642-1727).

Frederic William Herschell (1800).

Medición de la absorción de la luz infrarroja por una muestra.

Aplicaciones de la Espectroscopía Infrarroja

1. Análisis cualitativo. Identificación de compuestos químicos Elucidación de estructuras moleculares intermoleculares y cristalinas Investigación de interacciones moleculares2. Análisis cuantitativo. Mezclas de isómeros. Superficies de materiales Polímeros3. Química, física, materiales, biología,biotecnología,

ciencias ambientales, bioquímica.4. Muestras en estado sólido, líquido ó gaseoso.

MODOS DE VIBRACIÓN DE LOS ENLACES

Identificación de grupos funcionales

De 4000 a 2900 cm-1 : Tensión de C-H, O-H y N-H De 2500 a 2000 cm-1 : Tensión de triples enlaces y dobles enlaces acumulados. De 2000 a 1500 cm-1 : Tensión de C=O, C=N y C=C. De 1500 a 600 cm-1 : Zona de la huella dactilar (Flexión de enlaces CH,CO,CN,CC, etc..)

GRUPO FUNCIONAL NUMERO DE ONDA

(cm-1)

GRUPO FUNCIONAL

NUMERO DE ONDA

(cm-1)

OH (enlace de hidrógeno)

3100-3200 -C ≡ C- 2300-2100

OH (sin enlace de hidrógeno)

3600 -C ≡ N ~ 2250

Cetonas 1725-1700 -N=C=O ~ 2270

Aldehídos 1740-1720 -N=C=S ~ 2150

Aldehídos y cetonas α,β-insaturados

1715-1660 C=C=C ~ 1950

Ciclopentanonas 1750-1740 NH 3500-3300

Ciclobutanonas 1780-1760 C=N- 1690-1480

Ácidos carboxílicos 1725-1700 NO2 1650-1500 1400-1250

Esteres 1750-1735 S=O 1070-1010

Esteres α,β-insaturados 1750-1715 sulfonas 1350-1300 1150-1100

δ-Lactonas 1750-1735 Sulfonamidas y sulfonatos

1370-1300

1180-1140

γ-lactonas 1780-1760 C-F 1400-1000

Amidas 1690-1630 C-Cl 780-580

-COCl 1815-1785 C-Br 800-560

Anhidridos 1850-1740(2)

C-I 600-500

ESPECTROSCOPIA UV-VIS

ESPECTROSCOPIA UV VIS

Wave-Length

SpectralRegion

WaveNumber

100nm 200nm 380nm 780nm

50µm 30cm

Vacuum UV

Near orQuartz UV

VViissiibbllee NIR

InfraRed

Far-IR toMicrowave

2.5µm

25µm

4000/cm

400/cm

200/cm

E = h·ν = h·c/λ

UV-Visible Transiciones electrónicas entre los orbítales atómicos y moleculares

CROMÓFOROS

PRODUCE UN COMPUESTO CON ABSORCIÓN SELECTIVAENTRE 180 A 1100 nm

n-OCTANO NO ABSORBE

OCTIL NITRITO ABSORCIÓN A 230 nm

GRUPO COVALENTE INSATURADO RESPONSABLE DE LA ABSORCIÓN

AUXOCROMOS

• ORIGINAN DESVIACIONES BATOCRÓMICAS

• NO PRESENTAN ABSORCIÓN

• HIDRÓXILO, AMINO, HALÓGENO, ALQUILO, ETC

(ES UN GUPO SATURADO CON ELECTRONES NO ENLAZANTES QUECUANDO ESTA ENLAZADO A UN CROMOFORO, ALTERA SU ENERGIADE ABSORCION (max)) .

ABSORCIÓN SELECTIVA

VIOLETA VERDEROJO

Para caracterizar dichas absorciones además de la longitud de onda máxima para cada absorción debemos recordar la ley de Lambert-Beer, según la cual:

Dependiendo del tipo de enlace que consideremos como cromóforo la excitación electrónica que puede observarse es:

Donde:ε = Coeficiente de extinción molar, es una constante relacionada con el área de incidencia del cromóforo y la probabilidad de que produzca la absorción.l = recorrido en cm de la radiación a través de la muestra. c = concentración de la muestra en moles/litro.

Absorbancia = ε·l·c

E S P E C T R O S C O P I A U V V I S

H . .

C = O ¨

H

H . .

C = O ¨

H

T I P O S D E E L E C T R O N E ST I P O S D E E L E C T R O N E S

Cromóforos simples en Espectroscopía UV:

Electrones implicados

Enlace transición λmax (nm)

Electrones σ

C-C, C-H σ-σ* 150

-O- n-σ* 185

-N- n-σ* 195

Electrones n

-S- n-σ* 195

C=O n-π* 290

C=O n-σ* 190

Electrones π

C=C π-π* 190

Cromóforo Sustancia max (nm)

  Etileno 170 nm 15800

C=C t-2-Hexeno 184 10000

  Ciclohexeno 182 7600

  1,3-Butadieno 214 20000

C=C1-Octino 185

2222000126

C=OAcetaldehído 277

2908 (H2O)

16 (Hexano)

  Acetona 279 15

  Ácido acético 204 60

C=NOH Acetoxima 190 5000

NO2 Nitrometano 271 19

S=OCiclohexil metil sulfóxido

210 1500

DESVIACIONES ESPECTRALES

BATOCRÓMICO MAYOR (desp. Hacia el rojo)

(SUSTITUCION O EFECTO DEL SOLVENTE)

HIPSOCRÓMICO MENOR (desp. hacia el azul)(SUSTITUCION O EFECTO DEL

SOLVENTE)

EFECTO HIPERCRÓMICO MAYOR INTENSIDAD

EFECTO HIPOCRÓMICO MENOR INTENSIDAD

REGLAS GENERALESREGLAS GENERALES

2 CROMOFOROS SEPARADOS POR 1 CARBONO ADICIÓN

2 CROMOFÓROS CON CARBONOS ADYACENTES LARGA

ALTA INTENSIDAD

2 CROMÓFOROS CON EL MISMO CARBONO INTERMEDIOENTRE 1 Y 2

SISTEMA CONJUGADO

CH2(CH = CH)n COOH n MAX E

ACETICO 0 197 60

CROTONICO 1 208 12, 500

SORBICO 2 261 25, 600

2, 4, 6, OCTATRIENOICO 3 303 36, 500

2, 4, 6,8, DECATETRAENOICO 4 332 50, 000

ABSORCION CARACTERISTICA DECOMPUESTOS ORGANICOS

1.Compuestos que contienen solamente electrones .2.Compuestos saturados que contienen electrones n.3.Compuestos que contienen cromóforos con electrones . 3.1 Cromóforo Etilénico 3.2 Cromóforo Alquino 3.3 Cromóforo Carbonílico. a)Cetonas saturadas y aldehídos. b)-Dicetonas y -ceto aldehídos. c)-Dicetonas. d) Cetonas y aldehídos --insaturados. e) Acidos Carboxílicos. f) Esteres y Lactonas. g) Amidas y Lactamas.4. Azometinos (Iminas) y Oximas5. Nitrilos y Azo Compuestos.

6. Compuestos con Elaces N ú O. (Nitro, notroso, nitrato y nitrito)7. Grupos con enlaces múltiples con Azufre8. Cromóforo Benceno. a) sustitución para. b) sustitución orto y meta.9. Compuestos Heteroaromáticos. Anillos de cinco miembros. Anillos de seis miembros.

REGLAS DE FIESER

Reglas de Absorción de dienos

REGLAS DE FIESER- KUHU.(Para polienos con mas de 4 dobles enlaces conjugados)

REGLAS DE ABSORCIONDE ENONAS Y DIENONAS

(COMPUESTOS CARBONÍLICOSα-β INSATURADOS)

DETERMINACIÓN CUANTITATIVA

USANDO ABSORTIVIDAD

C = A / a*b

A = ABSORBANCIA

C= CONCENTRACIÓN DEL PROBLEMA

a = absortibidad

b= ESPESOR DE LA CELDA

1 2 3 4 5 6

1.00 0.50 0.25 0.125 0.062 0.031 0.0155

%T

No. de Celdas

LEYES DE ABSORCIÓN DE LUZ

X

0.21

0.1 0.2 0.3 0.4 CONC. g/L

1.0

0.8

0.6

0.4

0.2

ABS.

CURVA DECALIBRACIÓN

DEBENCENO

CURVA DECALIBRACIÓN

DEBENCENO

225.0 300 400 500 600 700 800 850.0

0.001

0.02

0.04

0.06

0.08

0.10

0.12

0.137

NM

A

ANALISIS CUANTITATIVO

CAFEÍNA

3. ESPECTROMETRIA DE MASAS

Espectrometría de Masas (MS) es una técnica analítica que permite elucidar la estructura química de una molécula orgánica observando su patrón de fragmentación

MS consiste en ionizar un compuesto químico para generar moléculas cargadas o fragmentos de ellas para medir la relación masa-carga (m/z)

1. Producir iones a partir de las moléculas a investigar.2. Separar estos iones de acuerdo con la relación masa- carga. 3. Medir las abundancias relativas de cada ión.

Procedimiento:Procedimiento:

1.1.La muestra se introduce al equipo de MS en forma de vaporLa muestra se introduce al equipo de MS en forma de vapor2.2. Los componentes de la muestra se ionizan lo que resulta en la Los componentes de la muestra se ionizan lo que resulta en la formación de partículas cargadas positivamente.formación de partículas cargadas positivamente.3.3.Los iones positivos se conducen hacia un campo eléctricoLos iones positivos se conducen hacia un campo eléctrico4.4.Se detectan los iones positivosSe detectan los iones positivos

PrincipioPrincipio

Convierte la muestra Convierte la muestra gaseosa en ionesgaseosa en iones Separa los iones en Separa los iones en

función del tamaño de función del tamaño de sus masassus masas

Mide la cantidad de Mide la cantidad de iones y provee la iones y provee la información para información para calcular su abundanciacalcular su abundancia

Terminología 

Ion Molecular

El ion obtenido por la pérdida de un electrón de una molécula.

Pico Base El pico más intenso en el MS, asignado como 100% intensidad.

M+ Símbolo del ión molecular.

Radical catiónico

Especies cargadas con un número impar de electrones.

Fragmento de iones

Cationes menores formados por la descomposicón del ión molecular.Estos corresponden a carbocationes más estables.

Product Ion ScanProduct Ion Scan

m1+

m2+

m2+

m2+

Product ion spectrum of a prticular compound

m1+ set

m2+ scan

NH2

O

+ e-NH2

O

M m/z = 121

- NH2

O

m/z = 105

- CO

m/z = 77

- C6H5

O

NH2

m/z = 44

Un requisito importante en MS es que el equipo y el analista tengan la habilidad para precisar el peso molecular de un compuesto desconocido

Los picos deben estar bien definidos y separados

La altura del valle entre dos picos adyacentes no debe ser superior al 10% de la altura total del pico más grande.

h

H ( h/H ) 100 < 10%

INSTRUMENTACION

Manejo de la muestra

• La muestra entra en forma de vapor y la cámara de ionización debe encontrarse al vacío.

• Los líquidos se introducen con una jeringa hipodérmica a través de un puerto de inyección.

• DIP (Direct Inlet Probe) La inyección directa permite el análisis de las muestras que poseen baja volatilidad y deficiente estabilidad térmica.

Cámaras de ionización y aceleración

• El flujo de gas que contiene la muestra entra a la cámara de El flujo de gas que contiene la muestra entra a la cámara de ionización (a P = 10ionización (a P = 10-6-6 – 10 – 10-5-5 Torr) y es bombardeado por un flujo de Torr) y es bombardeado por un flujo de electrones proveniente de un filamento caliente.electrones proveniente de un filamento caliente.

Tubo analizador

• El tubo analizador se encuentra al vacío de 10-7 – 10-8 Torr y a través de el pasa el haz de iones desde la fuente de ionización hasta el colector.

Colector de iones

• Se compone de rejillas que orientan un solo tipo de iones y que luego son detectados y amplificados por un multiplicador de electrones.

El espectro de Masas

Por lo general un espectro de MS se obtiene aplicando una energía de 70 eV. Con este valor de energía el evento mas simple que puede ocurrir es la remoción de un solo electrón de la molécula en la fase vapor.

Ión molecular = M+

Isótopos – Se presentan en compuestos analizados por MS en la misma abundancia a la que se encuentran en la naturaleza.

Un ejemplo de la contribución isotópica puede ser el análisis del bromuro de metilo.

PICO CORRESPONDIENTE AL IÓN MOLECULAR

El pico correspondiente al ión molecular puede mostrarse como una señal muy débil o incluso no aparecer

Puede ser útil:

• “La regla del Nitrógeno”:

Masa molecular par = número par o ausencia de átomos de Nitrógeno, con fragmentos impares en su mayoría.

Masa molecular impar indica número impar de átomos de Nitrógeno con fragmentos de masa par en su mayoría.

• Esta regla puede ser útil para moléculas que contienen: C, H, O, N, S, X, e incluso: B, P, Si, As y metales alcalinos.

La intensidad del ión molecular depende de la estabilidad de dicho ión

Fragmentos que pueden mostrar intensidad alta:

Compuestos aromáticos > alquenos conjugados > compuestos cíclicos > sulfuros orgánicos > alcanos > mercaptanos

Grupos funcionales que pueden reconocerse fácilmente:

Cetonas > aminas > ésteres > ácidos carboxílicos = aldehídos = amidas = haluros.

El ión molecular con frecuencia no puede detectarse para:

Alcoholes alifáticos, nitritos, nitratos, nitro compuestos, nitrilos y en compuestos altamente ramificados

Fragmentos característicos:

M – 15 = Pérdida de un grupo CH3

M – 18 = Pérdida de H2O

M – 31 = Pérdida de OCH3 en metil ésteres

M – 1 y M – 2 = Pérdida de H2 (frecuente en algunas moléculas termolábiles

H3CH2C O R CH3 + H2C O R

H3CH2C

H2C Br CH3CH2CH2 + Br

H3CH2C CH2 H2C CH2CH3 +

La posibilidad de romper un enlace covalente en particular está relacionada a la fuerza del enlace

Reglas para predecir la intensidad y tipo de fragmentos:

1.La altura relativa del ión molecular es mayor para moléculas lineales y va disminuyendo a medida que incrementa la cantidad de ramificaciones.

2.En una serie homóloga de compuestos, la altura del ión molecular por lo general disminuye a medida que se incrementa el PM. Ejemplo: ésteres de ácidos grasos (observar espectro de MS)

3.Mientras más sustituido se encuentre un átomo de Carbono, más fácil será romperlo en fragmentos.

CH3+ < R’CH2

+ < R2’CH+ < R3’C+

4.Dobles enlaces, ciclos y anillos aromáticos, generan fragmentos muy estables.

5. Los dobles enlaces favorecen el rompimiento alílico y generan carbocationes alílicos estabilizados por resonancia.

CH HCH2C R

-R

H2C CH

CH2

H2C CH

CH2

6. Anillos saturados tienden a romperse en la porción alquílica. Anillos insaturados pueden experimentar retro Diels-Alder

R- R

+

7. Un compuesto aromático alquil sustituído generalmente se rompe en el enlace al anillo dando como resultado el ión tropilio.

- R

H2C R CH2 CH2

8. Los compuestos con enlaces sencillos C – C unidos a un heteroátomo por lo general se rompen en el enlace con el heteroátomo.

9. El rompimiento de una molécula generalmente se asocia con la eliminación de moléculas más pequeñas pero estables, tales como: CO, H2O, NH3, H2S, HCN, etc.

Reacomodos

Estos fragmentos no se originan por el rompimiento simple de las moléculas sino como resultado de reacomodos intramoleculares durante la fragmentación.

Ejemplo:

REACOMODO DE Mc LAFFERTY que involucra la migración de átomos de Hidrógeno en moléculas que contienen heteroátomos unidos a un sistema (un doble enlace C=C o un carbonilo C=O)

O

CH2

CH2

CR2

H

Y

- R2C=CH2

Y = H, R, OH,OR, NR2

O

CH2Y

HO

CH2

Y

H

O

CH2Y

H

ESPECTROSCOPÍA DE RMN

“ Bajo condiciones adecuadas y en presencia de un campo magnético, una muestra puede absorber radiación electromagnética en una región y a una radiofrecuencia denominadas por las características propias de la muestra”

Nº MÁSICO Nº ATÓMICO

SEÑAL RMN EJEMPLOS

PAR PAR NO 12C6 , 16O8

PAR IMPAR SI 2H1, 10B5,

14N7

IMPAR PAR SI 13C6, 17O8

IMPAR IMPAR SI 1H1, 11B5,

15N7

  El espectrómetro de resonancia magnética nuclear

1. Un imán estable, con un controlador que produce un campo magnético preciso.2. Un transmisor de radiofrecuencias, capaz de emitir frecuencias precisas.3. Un detector para medir la absorción de energía de radiofrecuencia de la muestra.4. Una computadora y un registrador para realizar las gráficas que constituyen el espectro de RMN. Un espectro FT-RMN puede registrarse en 2 segundos utilizando menos de 5 mg de muestra.

1953 Se fabricó el primer RMN de manera comercial de:

60 MHz = 1.41 T80 MHz = 1.87 T90 MHz = 2.20 T100 MHz = 2.35 T

Actualmente, los instrumentos más utilizados tienen capacidad de

200 a 500 MHz

Aunque existen con capacidad de 800 a 1000 MHz

La muestra se introduce en solución de disolventes deuterados (sin protones, inerte, no polar, ejemplo: CCl4, CDCl3, CD3OD, CD3COCD3, C6D6, etc.)

La muestra se coloca en tubos de 5 mm de diámetro que entra al probeSe requieren de 5 a 20 mg de muestra en aproximadamente 0.5 mL de disolvente

Un espectro de RMN es una gráfica de la intensidad de señal en función de la frecuencia de la energía electromagnética que liberan los diversos núcleos de una muestra.

I. DESPLAZAMIENTO QUIMICO

Un método más exacto para expresar desplazamientos químicos es determinar el valor respecto a un compuesto de referencia que se añade a la muestra. La diferencia en la intensidad del campo magnético necesario para la resonancia de los protones de la muestra y de los protones de referencia se puede medir, ahora sí, con mucha exactitud.

Referencia más utilizada: TMS = Tetrametilsilano

H3C Si

CH3

CH3

CH3

Químicamente inerte, simétrico, volátil, soluble en la mayoría de los solventes orgánicos y genera una sola y delgada señal que absorbe a un campo más alto al resto de los compuestos orgánicos.

660 600 540 480 420 360 300 240 180 120 60 0

11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0

Hertz

ppm

Posiciones relativas en RMN:Campo bajo ó desprotegido. Campo alto ó protegido.

Las diferentes posiciones de estas señales en el espectro, son denominadas: desplazamiento químico.

Desplazamiento químico típico para protones influenciados por un solo grupo

Desplazamiento de 1H

FACTORES QUE AFECTAN AL DESPLAZAMIENTO QUIMICO (δ) EN RMN PROTÓNICA

1. El efecto inductivo por grupos electronegativos.

2. Apantallamiento ó protección magnética por los electrones.

3. La existencia de enlaces de hidrógeno.

♦ El desplazamiento químico cambiará dependiendo de la densidad electrónica alrededor del protón.

♦A mayor electronegatividad mayor desplazamiento (menor protección)

Compound, CH3X CH3F CH3OH CH3Cl CH3Br CH3I CH4 (CH3)4Si

X F O Cl Br I H Si

Electronegativity of X 4.0 3.5 3.1 2.8 2.5 2.1 1.8

Chemical shift, / ppm

4.26 3.4 3.05 2.68 2.16 0.23 0

1. EFECTO INDUCTIVO POR GRUPOS ELECTRONEGATIVOS

Compound CH4 CH3Cl CH2Cl2 CHCl3

/ ppm 0.23 3.05 5.30 7.27

♦Los efectos inductivos son acumulativos. Mas grupos electronegativos mas desprotección y por lo tanto mayor desplazamiento.

H signal -CH2-CH2-CH2Br

/ ppm 1.25 1.69 3.30

♦Estos efectos inductivos tienen una influencia através de la cadena.

Los electrones alrededor del protón crean un campo magnético que se opone al campo aplicado. Esto reduce el campo experimentado por los núcleos. Se dice que el núcleo está protegido o apantallado.

2. Apantallamiento o protección magnética por los electrones.

Los protones se hallan dentro de entornos electrónicos diferentes y, por tanto, se encuentran diferentemente protegidos o apantallados.

Por ejemplo, en el metanol.

♦ Los electrones en sistemas p (ej. Aromáticos, alquenos,

carbonilos etc.) interactúan con el campo aplicado los cuales

inducen un campo magnético no uniforme

Los protones experimentarán tres campos:

El campo aplicado, el campo originado por los electrones de

valencia y el campo debido al sistema.

B0

Núcleo

Electrones en movimiento

El grado de apantallamiento depende la densidad de los El grado de apantallamiento depende la densidad de los electrones en movimiento y en consecuencia del tipo de grupos electrones en movimiento y en consecuencia del tipo de grupos unidos al átomo de carbono que contiene H.unidos al átomo de carbono que contiene H.

3. Enlaces de Hidrógeno

Protones de -OH o –NH

Se observan en un rango amplio de desplazamiento químico.

Entre mas puentes de hidrógeno existan, mas protones hay

desprotegidos y el desplazamiento químico será mayor.

Sin embargo, la cantidad de enlaces de hidrógeno es suceptible

a factores como: solvatación, acidez, concentración y

temperatura, esto puede ser difícil de predecir.

Experimentalmente los protones de -OH and –NH pueden

identificarse empleando D2O como intercambio de H.

R-OH  +  D2O   <=>   R-OD   +   HOD

La intensidad relativa de una señal en la espectroscopia de RMN protón es proporcional al número de protones que contribuyen a la señal. La curva superpuesta a las señales del espectro, que se puede observar en la figura, es llamada curva de integración.

-0.1

0.0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

1.0

1.1

1.2

15.0 12.5 10.0 7.5 5.0 2.5 0.0 -2.5 -5.0

300 MHz ¹H NMRIn CDCl3

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CH3

Br

CH3

CH3

II. INTEGRACIÓN

La MULTIPLICIDAD de las señales se determina por el número de protones vecinos de acuerdo a la fórmula:

N + 1

N = Número de protones vecinos

La INTENSIDAD de las señales dependen también de N:

• En dobletes la relación de intensidad es 1:1• En tripletes la relación de intensidad es 1:2:1• En cuadrupletes la relación de intensidad es 1:3:3:1

III. MULTIPLICIDAD

Las áreas relativas del multiplete N+1 vienen dadas por el llamado triángulo

de Pascal:

CONSTANTES DE ACOPLAMIENTO.

Las distancias entre picos de los multipletes proporciona información estructural. A la distancia entre los picos de un multiplete (medida en Herzios) se le llama constante de acoplamiento entre los protones magnéticamente acoplados. Se simboliza como Jab donde Ha y Hb son los protones que acoplan entre sí.

La siguiente tabla muestra algunos valores típicos de constantes de acoplamiento:

Como se observa en la tabla anterior, las constantes de acoplamiento ayudan

a distinguir entre los posibles isómeros de un compuesto.

Como se obseva, el isómero E presenta mayor constante de acoplamiento entre Ha y Hb que el isómero Z.

01234PPM

H2C

H3C Cl

012345678PPM

O

0123456789PPM

OCH3

NO2

01234567PPM

O

0123456789PPM

O

CH3

Existen muchos experimentos de conectividad, los más comunes son:

COSY – Correlated Spectroscopy, Homonuclear Correlated SpectroscopyEspectro en 2-D de conectividad 1H – 1H

APT – Attached Proton TestDEPT – Distortionless Enhancement by Polarization Transfer

Conectividad 1H – 13C

Permite identificar y diferenciar entre CH3, CH2 y CH.Carbonos cuaternarios no aparecen en DEPT

CH3 y CH aparecen como líneas delgadas “hacia arriba” y CH2 como una línea “hacia abajo”.

El experimento depende de una modulación de la amplitud de la señal en dos periodos de tiempo de evaluación iguales.

HETCOR – Heteronuclear Chemical Shift

Correlaciona las señales de un espectro de 1H con las de uno de 13CEl espectro de 1H se coloca en el eje vertical y el de 13C de forma desacoplada en el horizontal.

INADEQUATE – Incredible Natural Abundance Double Quantum Transfer ExperimentConectividad 13C – 13C

Este experimento detecta conectividades entre dos átomos 13C – 13C adyacentes. Cada conectividad se muestra como un par de dobletes en el eje horizontal